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　　鴨病毒性肝炎(Duck virus hepatitis,DVH)簡稱鴨肝炎,是主要發(fā)生于3周齡以下雛鴨的一種傳播迅速、高度致死性的傳染病。1950年,Levine P P和Fabricant J在美國首先報道了Ⅰ型鴨病毒性肝炎的發(fā)生。1954年,Asplin報道鴨病毒性肝炎在英國暴發(fā)流行。隨后,加拿大、西德、意大利、印度、法國、匈牙利、日本等國均有報道。1963年首次報道在我國的上海地區(qū)某些鴨場也發(fā)生鴨病毒性肝炎DHV-Ⅰ型。而DHV-Ⅱ型和DHV-Ⅲ型病毒分別于1965年發(fā)現(xiàn)于英國諾福克和1969年發(fā)現(xiàn)于美國長島,DHV-Ⅱ型至今尚無其他國家的報道。

　　但近年來，國內外學者相繼報道了DHV-Ⅰ型的變異情況,Barnhardt株是在美國一個農(nóng)場分離到的一個明顯的血清學變異株,與DHV-Ⅰ型在中和試驗中呈部分交叉反應。在福州地區(qū)發(fā)現(xiàn)不能被標準DHV-Ⅰ型疫苗保護的鴨肝炎。蘇敬良等從疑似鴨肝炎的病死鴨體內分離到1株與Ⅰ型、Ⅲ型鴨肝炎病毒無血清學交叉免疫反應的小RNA病毒,暫時將其病毒稱為新型鴨肝炎病毒。

　　在該病的診斷上,依據(jù)其發(fā)病日齡、臨床癥狀和病理變化可做出初步診斷，但確診和病毒定型必須依賴進一步的病原學和血清學診斷。目前，應用于DHV的血清學診斷主要有中和試驗、酶聯(lián)免疫吸附試驗、瓊脂免疫擴散試驗、間接血凝試驗和免疫熒光等,下面就近年來的診斷方法做簡要概述。

　　1 臨床診斷

　　該病主要發(fā)生于3周齡以下的雛鴨,潛伏期短,常突然發(fā)病,感染雛鴨首先表現(xiàn)為跟不上群,此后短時間內就停止運動,蹲伏并半閉眼。病鴨身體側臥、兩腿痙攣后踢,頭向后背,呈角弓反張樣。雛鴨在出現(xiàn)癥狀后1 h左右就發(fā)生死亡。

　　剖檢特征性病變主要在肝臟,常表現(xiàn)為肝臟腫大、質脆,外觀淡紅、土黃或斑駁狀,表面有彌漫性出血點或出血斑；膽囊腫脹呈長卵圓形充滿膽汁,膽汁常呈褐色或淡茶色；脾臟和腎臟也多有不同程度的腫脹,表面有出血點或呈斑駁狀；心肌常呈淡灰色,質軟有淤血,似開水煮樣；此外,部分病例還可見喉、氣管、支氣管等有輕度卡他性炎癥及腦充血、出血等現(xiàn)象[5]。根據(jù)該病的發(fā)病情況、臨床癥狀和病理變化可作出初步診斷。

　　2 實驗室診斷

　　2.1 病毒的分離和初步鑒定

　　病毒初代分離一般使用鴨胚,在鴨胚中連續(xù)傳幾代后,很容易在鴨胚中增殖,Levine和Fabricant（1950）首次用鴨胚分離DHV獲得成功。因目前國內尚無SPF鴨場,而鴨胚中又往往含有DHV母源抗體,妨礙病毒增殖,故試驗研究以及制作疫苗時接種和傳代常用SPF雞胚,病毒感染后主要表現(xiàn)為胚胎蜷縮,發(fā)育不良,全身水腫,體表充血且頭頸、背部等常有散在的針尖大小的出血點。肝臟為土黃、灰綠或鮮紅色,腫大、質脆,出血點明顯,邊緣壞死或在表面有灰綠色或黃白色壞死區(qū),呈花斑狀,此外,有的雞胚尿囊液和卵黃囊還常呈綠色。胚體變化有一定的診斷意義。

　　獲得高純度的病毒抗原可以對病毒進行電鏡直接觀察,并開展免疫學監(jiān)測、診斷以及分子生物學研究。Taylor(1967)試圖以硫酸銨沉淀、超速離心方法對細胞增殖的DHV進行純化,但未能最終達到目的。以后很多學者嘗試著先離心初提,然后經(jīng)氯仿抽提,PEG反透析濃縮蔗糖密度梯度離心等方法進行提純,以得到較為純凈的病毒,也未能如愿。楊奎以抗DHV IgG偶聯(lián)活化的Sepharose4B制成親和層析柱,提純感染致死的雛鴨肝臟勻漿中的病毒,電鏡下背景干凈,雜蛋白少,病毒大小約為40 nm,但病毒的特性未進一步驗證。孫剛等在電鏡下可見到直徑為32 nm～49 nm的病毒粒子,顆粒結構清晰,大小和結構均符合Ⅰ型ＤＨＶ的特征。

　　DHV由于病毒顆粒較小,得到較為純化的病毒一直困擾著研究者,很多學者通過各種提純的方法進行嘗試,但至今尚未見到一張確切的純化病毒的電鏡照片。

　　2.2 中和試驗

　　由于至今尚未明確DHV的基因序列,因此該病的實驗室診斷主要依靠血清學中和試驗加以診斷。Levine P R等（1950）首先將中和試驗(Virus-neutralization test, VN)應用于DHV診斷鑒定,以后逐漸為各國學者所引用。通常在雞胚上以固定血清-稀釋病毒法進行,也有人在鴨胚、雛鴨或病毒適應細胞中進行試驗。Hwang記述了一種準確、可重復的Ⅰ型鴨肝炎病毒雞胚中和試驗。Woolcock P R等[9]首先報道了用中和抗體進行的空斑減少試驗,認為要比雞胚中和試驗敏感得多。Chalmers和Woolcock檢測了從16個非感染鴨收集的血清,其半數(shù)空斑減少滴度(VN)在1∶12到1∶250之間,平均1∶59。他們建議陰性對照血清的*空斑減少滴度應設為1∶250。Kaleta E F[10]用北京鴨腎細胞培養(yǎng)的DHV進行了微量中和試驗,既快速又易于判定終點。陳琨等成功地在鴨胚單層肝細胞上進行了DHV-Ⅰ型的微量血清中和試驗,發(fā)現(xiàn)DHV形成CPE的能力可以被特異性血清中和,可以用于病毒鑒定、疫病診斷和免疫檢測。

　　到目前為止,VN仍是診斷鴨病毒性肝炎的最可靠的方法,該方法被認為是既特異又敏感,是公認的方法。缺點為煩瑣、費時，不能快速診斷,不適于基層應用。